EKSPLORASI BAKTERI ENDOFITIK DAN POTENSINYA DALAM PENGHAMBATAN JAMUR AKAR PUTIH (RIGIDOPORUS MICROPORUS)

Authors

  • Budi Setyawan Balai Penelitian Getas Pusat Penelitian Karet Jl. Pattimura KM 6 Salatiga Jawa Tengah
  • Intan Berlian Balai Penelitian Getas Pusat Penelitian Karet Jl. Pattimura KM 6 Salatiga Jawa Tengah
  • Nur Eko Prasetyo Balai Penelitian Getas Pusat Penelitian Karet Jl. Pattimura KM 6 Salatiga Jawa Tengah

DOI:

https://doi.org/10.22302/ppk.jpk.v34i2.273

Keywords:

Bakteri endofit, Jamur Akar Putih, identifikasi, penghambatan, R. Microporus

Abstract

Salah satu cara pengendalian jamur akar putih (JAP) yang memiliki potensi besar untuk dikembangkan dimasa mendatang adalah secara biologi dengan memanfaatkan mikroba antagonis. Pada berbagai komoditas termasuk tanaman karet, bakteri endofitik antagonis telah dimanfaatkan untuk menghambat pertumbuhan patogen. Penelitian ini dilakukan untuk mengeksplorasi, mengidentifikasi bakteri endofitik dari tanaman karet serta menguji potensinya sebagai antagonis terhadap Rigidoporus microporus. Lima isolat berhasil diisolasi dari tanaman sehat di areal endemik JAP (isolat A10, A14, A16) dan areal non endemik JAP (isolat GN1, GN2). Uji oposisi langsung menunjukkan isolat A10 memiliki zona penghambatan terbesar (0,3 cm) pada 4 hari setelah inokulasi dibandingkan isolat lainnya. Identifikasi secara molekuler berdasarkan sekuens gen parsial 16S rRNA dan gen gyrase subunit B terhadap isolat A10 adalah Bacillus cereus. Aktivitas enzim protease ditunjukkan oleh isolat A10 pada medium skim milk dan kemampuannya mencairkan gelatin pada hari keenam setelah inokulasi. Kemampuan menghambat filtrat ekstraseluler yang diuji dengan metode paper disk belum menunjukkan zona penghambatan yang konsisten pada tiap konsentrasi filtrat ekstraseluler yang diberikan. Pada hari ketiga setelah inokulasi (HSI) tidak terdapat perbedaan nyata antar perlakuan. Pengujian lebih lanjut terhadap B. cereus isolat A10 perlu dipertimbangkan kembali karena potensi antagonismenya yang masih lemah terhadap R. microporus dan adanya potensi lain sebagai penyebab penyakit bagi manusia.

References

Anonim. 2014. Gelatinase Test. http://www.hccfl.edu/media/686466/gelatinase%20test.pdf. Diakses tanggal 31 Januari 2014.

Balan, S.S., R. Nethaji, S. Sankar & S. Jayalakshmi. 2012. Production of gelatinase enzyme from Bacillus spp. isolated from the sediment sample of Porto Novo Coastal sites. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine 2012: 1811-1816.

Direktorat Jenderal Perkebunan (Ditjenbun). 2015. Data Luas Serangan OPT Karet Nasional dan Taksasi Kerugian Hasil. Direktorat Jenderal Perkebunan, Kementrian Pertanian, Jakarta.

Feng-Xia Li, Hui-Quan Ma, Jing Liu & Chao Zhang. 2012. Antagonistic E!ects of Bacillus cereus Strain B-02 on Morphology, Ultrastructure and Cytophysiology of Botrytis cinerea. Polish Journal of Microbiology 61 (2): 119-128.

Hallmann, J., G. Berg dan B. Schulz. 2006. Isolation Procedures for Endophytic Microorganism. In: Schulz, B., C. Boyle dan T.N. Sieber (eds.), Soil Biology, Volume 9, Microbial Root Endophytes. Springer-Verlag Berlin Heidelberg, p: 299-319.

Joseph, K. 2006. Use of biological control in tropical agrosystems and its scope for Corynespora disease management. In: Jacob, C.K. (ed.), Coynespora leaf disease of Hevea brasiliensis, Strategies for management. Rubber Research Institute of India, Kottayam, p: 109-121.

Joseph, K. dan H.K. Deka. 2007. Biocontrol techniques. In: Jacob, C.K., P. Srinivas dan C.B. Roy (eds.), A Laboratory Manual for International Training on Strategies for Management of Corynespora Leaf Fall Disease of Hevea brasiliensis. Rubber Research Institute of India, Kottayam, p: 31-39.

Kebabci, O. & N. Cihangir. 2011. Isolation of protease producing novel Bacillus cereus and detection of optimal conditions. African Journal of Biotechnology 10 (7): 1160-1164.

Kuklinsky-Sobral, J., W.L. Araujo, R. Mendes, A.A. Pizzirani-Kleiner dan J.L. Azevedo. 2005. Isolation and characterization of endophytic bacteria from soybean (Glycine max) grown in soil treated with glyphosate herbicide. Plant and Soil (2005) 273: 91–99.

Madigan M.T., Martinko J.M. & Parker J. 1997. Biology of Microorganisms. Eight edition. New Jersey: Prentice-Hall.

McIntyre, L., K. Bernard, D. Beniac, J.L. Isaac-Renton & D.C. Naseby. 2008. Identification of Bacillus cereus Group Species Associated with Food Poisoning Outbreaks in British Columbia, Canada. Appl. Environ. Microbiol. 74 (23): 7451-7453.

Nabrdalik, M., K. Grata & A. Latala. 2010. Proteolytic activity of Bacillus cereus strains. Proceedings of ECOpole 4 (2): 273-277.

Nishiguchi, M.K. P. Doukakis, M. Egan, D. Kizirian, A. Phillips, L. Prendini, H.C. Rosenbaum, E. Torres, Y. Wyner, R. DeSalle, and G. Giribet. 2002. DNA isolation Protocols. In: DeSalle, R., W. Wheeler and G. Giribet (eds.), Techniques in Molecular Systematics and Evolution, Birkhäuser, Basel, Germany, pp 243-81.

Pereira, P., A. Nesci dan M.G. Etcheverry. 2007. Efficacy of bacterial seed treatments for the control of Fusarium verticillioides in maize. International Organization for Biological Control (IOBC), Rio Cuarto. Springer. 9p.

Senesi, S. & E. Ghelardi. 2010. Production, Secretion and Biological Activity of Bacillus cereus Enterotoxins. Toxins 2010 (2): 1690-1703.

Tallent, S.M., K.M. Kotewicz, E.A. Strain & R.W. Bennett. 2012. Efficient Isolation and Identification of Bacillus cereus Group. Journal of AOAC International 95 (2): 446-451.

Yamamoto, S. & S. Harayama. 1995. PCR Amplification and Direct Sequencing of gyrB Genes with Universal Primers and Their Application to the Detection and Taxonomic Analysis of Pseudomonas putida Strains. Appl. Environ. Microbiol. 61 (3): 1104–1109.

Zhao, L., Y. Xu, R. Sun, Z. Deng, W. Yang dan G. Wei. 2011. Identification and Characterization of The Endophytic Plant Growth Prompter Bacillus cereus Strain MQ23 Isolated from Sophora alopecuroides Root Nodules. Brazilian Journal of Microbiology 42: 567-575.

Downloads

Published

2016-10-12

Issue

Section

Original Research Article